Тест НМО с ответами «Бактериологический анализ мочи. Технологический поток бактериологического исследования мочи (по утвержденным клиническим рекомендациям)»

Ответы к тесту НМО на тему «Бактериологический анализ мочи. Технологический поток бактериологического исследования мочи (по утвержденным клиническим рекомендациям)»

1. В большинстве случаев при инфекциях мочевыводящих путей обнаруживают

1) E. Coli;+
2) P. Aeruginosa;
3) Pseudomonas spp;
4) S. Aureus;
5) S. Saprophyticus.

2. В тест системах типа «дипстрик» реализован следующий метод определения титра бактерий в моче

1) микроскопический;
2) несекторный;
3) полуколичественный штриховой;+
4) секторных посевов.

3. Выявление ?-глюкуронидазы в хромогенной среде Uriselect 3 является характерным идентификационным признаком

1) E. coli;+
2) E. faecalis;
3) S. agalactiae;
4) Staphylococcus spp.

4. Грамположительные и грамотрицательные микроорганизмы возможно изолировать на питательных средах:

1) CLED;+
2) МакКонки;
3) Эндо;
4) колумбийский CNA агар;
5) кровяной агар.+

5. Диагностически значимый титр обнаруженных микроорганизмов (КОЕ/мл) в моче является самым низким при использовании забора мочи с помощью

1) надлобковой пункции;+
2) постоянного катетера;
3) сбора средней порции при свободном мочеиспускании;
4) цистоскопии, катетеризации.

6. Диагностически значимый титр обнаруженных микроорганизмов (КОЕ/мл) при отсутствии симптомов инфекций мочевыводящих путей

1) 103;
2) 104;
3) 105;+
4) 106.

7. Для селективной изоляции грамотрицательных микроорганизмов используются питательные среды

1) CLED;
2) МакКонки;+
3) Эндо;+
4) колумбийский CNA агар;
5) кровяной агар.

8. Для селективной изоляции грамположительных микроорганизмов используется питательная среда

1) CLED;
2) МакКонки;
3) Эндо;
4) колумбийский CNA агар;+
5) кровяной агар.

9. Для стабилизации концентрации бактерий в моче допускается использовать консервант

1) азид натрия 0,5%;
2) борная кислота 1%;+
3) параформ 2,5%;
4) этанол 75%.

10. К вторичным возбудителям инфекций мочевыводящих путей относят

1) Acinetobacter spp;
2) E. Coli;
3) S. Aureus;+
4) S. Pneumoniae;+
5) S. Saprophyticus;
6) Stenotrophomonas maltophilia.

11. К минимальным идентификационным признакам Pseudomonas aeruginosa относится отсутствие

1) ДНК-азы;
2) аргинин-дигидролазы;
3) лизин-декарбоксилазы;+
4) оксидазы.

12. К минимальным идентификационным признакам S. Aureus относится

1) наличие каталазы;
2) наличие коагулазы;+
3) отсутствие ДНК-азы;
4) резистентность к новобиоцину.

13. К минимальным идентификационным признакам Энтерококков относится

1) зона задержки роста оптохином не превышающая 14 мм;
2) повышенная чувствительность к цефалоспоринам;
3) резистентность к новобиоцину;
4) способность расти в средах с высоким (? 6,5%) содержанием NaCl.+

14. К первичным возбудителям инфекций мочевыводящих путей относят:

1) C. urealyticum;
2) E. Coli;+
3) Klebsiella spp;
4) P. Vulgaris;
5) S. Agalactiae;
6) S. Saprophyticus.+

15. К предварительным методам оценки наличия бактерий относятся

1) метод секторных посевов;
2) методы обнаружения продуктов метаболизма бактерий;+
3) микроскопические методы;+
4) несекторный метод;
5) полуколичественный штриховой метод.

16. К сомнительным возбудителям инфекций мочевыводящих путей относят

1) Acinetobacter spp;+
2) Morganella spp;
3) Pseudomonas spp;+
4) Serratia spp.;
5) Микобактерии;
6) Сальмонеллы.

17. Какое количество секторов используют в методе секторных посевов?

1) 2;
2) 4;+
3) 6;
4) 8.

18. Метод секторных посевов стандартизирован для исследования объема мочи

1) 0,005 мл;+
2) 0,010 мл;
3) 0,050 мл;
4) 0,100 мл.

19. Морфология E. сoli представлена

1) крупными, оранжево-коричневыми колониями;
2) мелкими, желто-зелеными с металлическим блеском колониями;
3) мелкими, светло-голубыми колониями;
4) плоскими, розово-красными колониями средней величины.+

20. Морфология колоний E. Faecalis представлена:

1) крупными, оранжево-коричневыми колониями;
2) мелкими, бирюзовыми колониями;+
3) мелкими, светло-голубыми колониями;
4) средней величины, плоскими, розово-красными колониями.

21. Морфология колоний P. Aeruginosa представлена:

1) крупными, оранжево-коричневыми колониями;
2) мелкими, желто-зелеными с металлическим блеском колониями;+
3) мелкими, светло-голубыми колониями;
4) средней величины, плоскими, розово-красными колониями.

22. Морфология колоний P. mirabilis, P. vulgaris представлена

1) крупными, оранжево-коричневыми колониями;+
2) мелкими, желто-зелеными с металлическим блеском колониями;
3) мелкими, светло-голубыми колониями;
4) средней величины, плоскими, розово-красными колониями.

23. Морфология колоний S. Agalactiae представлена:

1) крупными, оранжево-коричневыми колониями;
2) мелкими, бирюзовыми колониями;
3) мелкими, светло-голубыми колониями;+
4) средней величины, плоскими, розово-красными колониями.

24. Морфология колоний Staphylococcus spp. представлена

1) крупными, оранжево-коричневыми колониями;
2) мелкими, светло-голубыми колониями;
3) средней величины и крупными, белыми колониями;+
4) средней величины, плоскими, розово-красными колониями.

25. Преаналитическими являются следующие этапы технологического процесса:

1) бактериологическое исследование;
2) идентификация образца;+
3) определение чувствительности возбудителей к антибиотикам;
4) оценка пригодности образца для исследования;+
5) предварительная оценка наличия бактерий;
6) хранение и транспортировка проб.+

26. При исследовании результатов бактериологического анализа наиболее достоверны

1) случайный объем мочи, собранный в любое неустановленное время;
2) средняя порции мочи 3-20 мл, собранная в вечернее время перед сном;
3) средняя порция мочи 3-20 мл, собранная после ночного отдыха до завтрака;+
4) средняя порция мочи 50-100 мл, собранная после ночного отдыха до завтрака.

27. При проведении слайд-планшетного центрифужного метода подсчет числа бактерий производят в

1) 12 полях зрения;+
2) 4 полях зрения;
3) 6 полях зрения;
4) 8 полях зрения.

28. Пробы мочи разрешается хранить (при температуре +4°С) в течение

1) 12 часов;
2) 24 часов;+
3) 48 часов;
4) 6 часов.

29. Пробы мочи с добавлением консерванта при комнатной температуре разрешается хранить в течение

1) 12 часов;
2) 24 часов;+
3) 48 часов;
4) 6 часов.

30. Продлить инкубацию тест-системы дипстрик при выполнении бак анализа необходимо в случае

1) возраста пациента менее 3-х лет;
2) если забор мочи осуществлялся посредством катетеризации мочевого пузыря;
3) если образец мочи получен посредством надлобковой пункции;+
4) чрезмерного роста бактериальных колоний.

31. Пункцию мочевого пузыря проводят

1) при необходимости определения локализации инфекции;+
2) при неэффективности лечения антибиотиками;
3) при переломах костей таза;
4) при повреждении брюшной стенки;
5) у пациентов с заболеваниями предстательной железы или отсутствием контроля мочеиспускания.+

32. Тест-системы «дипстрик» используют при определении титра бактерий в моче

1) методом обнаружения продуктов метаболизма бактерий;
2) методом секторных посевов;
3) микроскопическим методом;
4) несекторным методом;
5) полуколичественным штриховым методом.+

33. Число колоний для определения титра бактерий в моче при ее посеве несекторным методом в объеме 1 мкл умножают на

1) 10;
2) 102;
3) 103;+
4) 104.

34. Число колоний для определения титра бактерий в моче при ее посеве несекторным методом в объеме 100 мкл умножают на

1) 10;+
2) 102;
3) 103;
4) 104.

Со временем мы опубликуем ответы на новые тесты!

Рейтинг
( Пока оценок нет )
Вячеслав Филатов/ автор статьи

Бывший член Национальной Медицинской Палаты

Понравилась статья? Поделиться с друзьями:
Ответы НМО
Добавить комментарий

;-) :| :x :twisted: :smile: :shock: :sad: :roll: :razz: :oops: :o :mrgreen: :lol: :idea: :grin: :evil: :cry: :cool: :arrow: :???: :?: :!: